飼料檢驗法有關之國家標準(下)

 

 15.尿素�A活性試驗

  15. 1 擴散測定法

   15. 1. 1 試 劑

    15. 1.1. 1磷酸緩衝液 ( phosphate  buffer ):3 g  Na 2 HPO 4 及 2 g  KH 2 PO 4 加入蒸

         餾水使達 100 ml。

    15. 1.1. 2硼酸試劑 ( boric  acid   reagent ):混合 200 ml 酒精,700 ml 蒸餾水,硼酸

         5 g 及指示劑 ( 指示劑:係含 0.033%溴甲酚綠 ( bromocresol - green ) 及

        0.066%甲基紅溶於酒精中 ),10 ml此溶液須呈微紅色,最後加入蒸餾

       水使容量為 100 ml。

  15. 1.2方法:取樣品 0.5 g置入康衛氏玻璃皿 ( Conway  dish ) 之外室 ( out  chamber )

       中均勻分佈之,復加入 2 ml 之磷酸鹽緩衝液,在室內 ( inner  chamber )

       置入 1 ml 硼酸試劑將皿徐徐搖動,10 分鐘後加入 0.5 ml 4%尿素於外 

       室,加上皿蓋,用手徐徐搖皿一次,靜置分鐘 ( 正確的 ),而後稍許拉

       開小孔上之玻璃蓋注入 1 ml 之飽和碳酸鉀液,隨即將玻璃蓋封閉,如

       此使氨擴散而被吸收於內室之硼酸試劑中,此項擴散需費時 90 至120

       分鐘。最後開蓋,以 1/50  N鹽酸滴定內室中之氨重,至溶液由綠色

       轉變為紅色為止求出氨之毫克數 ( A ),尿素�A活性計算公式如下:

              尿素�A活性=2×A×( 60÷34 )×100

          式內A=0.5 g 樣品中產生之氨 mg 數。

             =( a-b )×F×0.28

             a=試驗中 1/50   N鹽酸滴定數

             b=空白試驗中 1/50   N鹽酸滴定數

             F=1/50  N鹽酸之係數

           0.28=相當於 1/50  N鹽酸 1 ml 之氨毫克數

  15. 2  pH  增值方法 ( methed  of   increase  in  pH )

   15. 2.1 裝    置

    15. 2.1.1 水浴:須能保持溫度於 30℃ ± 5℃者。

    15. 2.1.2 pH   計:具有玻璃電極甘汞電極並有可試驗 5 ml 之溶液,此為一種精

           密儀器須裝有溫度補正器,其敏感度應為 0.02 pH 單位或更

           佳。儀器之操作及 pH 之測定均應依照製造者之說明,該 pH

           計應在測定前以標準緩衝液加以校正。

    15. 2.1.3 試管 20 mm×150 mm,配有橡皮塞。

   15. 2.2 溶    液

    15. 2.2. 1磷酸鹽緩衝液 ( phosphate  buffer   solution ) 0.05 M:溶解 3.403 g 磷酸二

         氫鉀 ( KH 2 PO 4 AR  grade ) 於約 100 ml 新蒸餾水中,溶解 1.355 g磷酸

         氫二鉀 ( KH 2 PO 4 AR  grade ) 於約 100 ml 水中,然後將該兩種溶液合

         併並配成 1000 ml。若此等試藥均係純粹 pH 值應為 7.0 否則應在使用

         則用強酸或強鹼調整為 7.0,依上述方法製備之緩衝液,其有效期在

         90 天以內。

    15. 2.2.2 已加緩衝液之尿素溶液 ( buffered  Urea  solution ):溶解 15 g 尿素 ( AR 

         grad ) 於 500 ml 磷酸鹽緩衝液中加 5 ml 甲苯作為防腐劑以防止黴菌之

          形成,依第 15. 2.2.1 節所述之方法調整尿素溶液 pH 值為 7.0。

   15. 2.3 樣品之製備 ( preparation  of  sample ):研磨樣品為儘可能的細粉,至少有

        60%應通過試驗節孔徑 0.4 mm  CNS 386 但勿使溫度昇高。豆粉無須研

         磨,但須作適當之混合。

   15. 2.4 步     驟

    15. 2.4.1 秤準 0.200 g ( ±0.001 g ) 樣品放入試管,加 10 ml 已加緩衝液之尿素溶

          液加塞混合,然後置於 30℃ 之水浴中,在混合操作之時試管切勿倒

          置。

    15. 2.4.2 空白試驗,係秤準 0.200 g ( ±0.001 ) 樣品放入試管,並加入 100 ml 磷

         酸鹽緩衝液,加塞混合,並放置 30℃ 水浴中而製成,在上項試驗之

          製備與空白試驗之製備須相隔 5 分鐘。然後每隔 5 分鐘攪拌試管之內

          容物一次。

    15. 2.4.3 在 30 分鐘之後,相隔 5 分鐘將試驗及空白試驗之試管自水浴中取

          出,將上層的液體移入 5.0 ml 燒杯中,恰在自水浴中取出 5 分鐘時,

          分別測定此種上層液體之 pH 值。

   15. 2.5 計算:試驗之 pH 值與空白試驗之 pH 值兩者之間差異即為尿素�A活潑度

            之指數。

      註:1.操作必須小心,以防止各玻璃儀器或電極之沾污,若 pH 計不能立

            即表示穩定 pH 值時應加汞電極之多孔纖維之流動速度降低。

      註:2.簡迅尿�A測定方法 ( 美國道遜黃豆加工廠自訂方法 )。

      試     劑:

         一、結晶尿素。

         二、酚紅 ( phenol  red ) 指示劑 0.62% 之溶液。

      步     驟:

         一、放 0.2 g 的豆粉於試管中。

         二、加入 0.02 g 的結晶尿素。

         三、加二滴的酚紅指示劑。

         四、加 20 至 30 ml 蒸餾水。

         五、振盪 10 秒鐘。

         六、觀察首先呈顯粉紅色於樣品或溶液之時間。

         七、報告尿素�A之活力如下:

           1 分鐘內呈色者––活力很強。

           1 至 5 分鐘內呈色者––活力強。

           5 至 15 分鐘內呈色者––有點活力。

           15 至 30 分鐘內呈色者––沒有活力。

          附註:10 分鐘內不呈顯粉色者或紅色豆粉即認為合格。

 16.毒質檢驗法 ( 蜜姆辛檢驗法 )

  16. 1 豫知試驗 ( Presumptive  test ) 取飼料粉 200 g 以熱氨水 ( 70 至 80℃ 0.05  N   pH 

    10.5 ) 6小時抽取液中黏質用 50%酒精沉澱拋棄之,酒精抽取液經淺壓濃縮到

    50 ml。

   16. 1.2濾紙屢次分析:以微量吸量 ( 出口改為毛細管 ) 取 0.05 ml 之蜜姆辛 (

       minosine ) 濃縮液點於東洋濾紙 50 號上,展開溶煤使用正丁醇:醋酸:水

       =4:1:2,斑點之判定取兩張展開濾紙分別以二氫茆三銅 ( 0.1 至 0.15%

        溶於正丁醇中 ) 及氯化鐵 ( 0.2%溶於正丁醇 ) 濆灑。

       實驗例

呈色試藥 二氫茆三銅

ninhydrin

氯化鐵

FeCl 3

呈色反應 紫 黑  紫

值

=1:4

0.26 0.26

        如兩種濆藥結果符合上表,即可初步判定可能含有蜜姆辛

        註:此試驗可測出 0.002 mg 之蜜姆辛

  16. 2 確認試驗 ( Confirmation  test )

   16. 2.1 標準蜜姆辛之製備:將 2.5 kg 之新鮮銀合歡種子依 16. 1項之處理,濃縮

      液中加入鉛鹽,可使蜜姆辛結晶析出,然後用水再結晶,乾燥之。

   16. 2.2 蜜姆辛之確認,豫知試驗為陽性者,表示其含蜜姆辛之量已超出安全度 (

      暫定為 0.01%如定全度為 0.001%則 16. 1 項中應予濃縮到 5 ml ) 依第 16.

      1.2節之法分離蜜姆辛結晶,並確認其存在。

 17.鉻含量檢驗

  17. 1 試     藥

   17. 1.1 鉻標準溶液:0.2828 g 特級重鉻酸鉀溶解於水製成全量 1000 ml ( 1 ml 中含

      0.1 ml 鉻 ) 試驗時再以水稀釋成適當濃度後供用。

   17. 1.2 碳酸鈉:試藥級。

   17. 1.3 硝酸鈉:試藥級。

   17. 1.4 氫氧化鈉:試藥級,以水溶解做成 15% w/v 溶液。

   17. 1.5 硫   酸:試藥級。

   17. 1.6 過氧化氫:試藥級。

   17. 1.7 二苯基二胺�J溶液 ( Diphenyl  Carbazide ):0.25 g 試藥級之二苯基二胺�J溶

         解於容量約 25 ml 乙醇中溶解後,以水稀釋至 100 ml。

   17. 1.8 使用之其他試管及蒸餾水中,已確認無路之存在者。

  17. 2 裝     置

   17. 2.1 分光光度計:一般型鎢絲絲分光光度計或光電光度計,測定波長 540

        nm。

   17. 2.2 吸收槽:1 ㎝2 長方形玻璃吸收槽。

  17. 3 檢量線製作:量取含有 5 至 30 ug 之標準鉻溶液數個於容量 50 ml 之容量瓶

    中。加入 5 ml 稀硫酸 ( 1+20 ) 使溶液呈酸性後,各瓶中復加入發色劑 ( 二苯

    基二胺�J ) 2 ml,則以蒸餾水稀釋 50 ml 量後,在波長 540 nm 下測定吸光度,

    以鉻含量為橫軸,吸光度為縱軸畫成檢量線。

  17. 4 步驟 ( 適用於 0.1 ppm 至 0.5 ppm 鉻含量樣品 ):正確秤取約 3 g試樣於白金坩堝

    中灰化後添加碳酸鈉 2 g 及硝酸鈉 0.1 g攪拌均勻後低溫徐徐加熱,逐次昇高

    溫度至 900 ℃左右,乃繼續加熱溶解約 15 分鐘,冷卻後內容物以 50 ml 均量

    之蒸餾水洗入燒杯中,在水浴上加溫至可溶分完全溶解後,過濾,濾渣以溫

    水洗滌數次可溶分完全移入濾液中。過濾液在電氣加熱板上加熱濃縮至全量

    約 20 ml時徐徐加入 7.2 N硫酸 6 ml,煮沸逐出二氧化碳,並以徐熱濃縮殆至

    乾涸,乃加入溫水 20 ml 溶解可溶性鹽類後,過濾除去呈膠狀之矽。濾液中

    加入 15%( w/v ) 氫氧化鈉溶液使溶液呈中性 ( 以石蕊紙測定 ) 後再加入過氧

    化氫 2 ml,乃在電氣加熱板上加熱約 10 分鐘。冷卻溶液,則移入容量 50 ml

    之容量瓶中,以硫酸中和使溶液呈中性 ( 以石蕊紙測定 ) 後,再加入 5 ml

    稀硫酸 ( 1+20 ) 並以蒸餾水稀釋至約 20 ml量時,加入二苯基二胺�J 2 ml 乃以

    蒸餾水正確做成 50 ml 溶液,在 5 分鐘內依分光光度計測定波長 540 nm 下之

    吸光度,由檢量線計算鉻含量。

          飼料中鉻含量 ( % )=由檢量線讀取之鉻含量÷試樣重量

 18.包裝及標識:檢查包裝是否合乎規定,標識是否齊全。

 

第一修訂:59年 9 月 7 日

第二修訂:63年 5 月 11日

第三修訂:67年 3 月 21日

第四修訂:72年 7 月11日

    公  布  日  期

    58年 6 月 4 日

經     濟      部     中     央      標     準     局      印     行     修  訂  日  期

    75年 8 月 4 日

  

飼料營養雜誌第二冊合訂本

1987年元月號至1987年第12期

八七年.第十二期 ( 92 ~ 96 )

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